無縫克隆的原理:
在載體末端和引物末端應具有15-25個同源堿基(同源臂)。通過T5核酸外切酶、DNA聚合酶、DNA連接酶,三種酶同時發揮功能,從而達到單片段或多片段與載體連接的技術。
T5核酸外切酶:5‘→3’端消化DNA片段,
形成粘性末端;DNA聚合酶:填補缺口;
DNA連接酶:兩條DNA 單鏈黏合起來。
無縫克隆的特點
傳統分子克隆
無縫克隆
傳統分子克隆和無縫克隆對比:
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單次插入片段:傳統分子克隆一輪只能插入一個片段;無縫克隆單個至多個(≤5)。
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受限于酶切位點:傳統分子克隆是;無縫克隆不是。
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引入多余序列:傳統分子克隆是;無縫克隆不是。
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流程&操作時間:傳統分子克隆流程繁瑣,時間長。
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無縫克隆流程簡單,時間短。
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克隆效率:傳統分子克隆較低;無縫克隆單片段≥95%。
實驗流程
1.載體制備
載體的線性化:酶切(單酶切、雙酶切)或反向 PCR 擴增。
① 酶切制備
使用限制性內切酶進行載體線性化時,推薦使用雙酶切方法進行,其次是單酶切。
注意:
1:經雙酶切進行線性化的載體無需去磷酸化,經單酶切則需要去磷酸化;
2:酶切完成后,應將快速內切酶失活或將目的產物進行純化后再用于重組反應。
② 反向 PCR 擴增制備
載體末端引物設計:
反向 PCR 擴增制備線性化載體需要使用的引物;
為了減少擴增突變的引入,推薦使用高保真 PCR Mix 進行擴增,推薦使用預線性化的質粒作為模板,以減少環狀質粒模板殘留對克隆陽性率的影響。
注意:以環狀質粒為模板時,PCR 產物需要使用 DpnI 等甲基化敏感型限制性內切酶對擴增產物進行處理,或對產物進行膠回收純化。
2.插入片段制備
引物設計原則:
通常使用PCR擴增的方法來獲得目的片段,PCR 引物的5' 端必須包含與其相鄰片段(插入片段或載體)末端同源的15~25nt(推薦 18 nt)序列 , 以保證擴增產物的5' 端和3' 端分別與相鄰片段形成重疊序列。目的片段 PCR 引物包括:載體與插入片段連接處引物、插入片段與片段連接處引物。
插入片段正向擴增引物:
5' —上游載體末端正向同源序列+酶切位點(可選)+ 基因特異性正向擴增序列—3’
插入片段反向擴增引物:
3‘ —基因特異性反向擴增序列 + 酶切位點(可選)+ 下游載體末端反向同源序列—5’
載體與插入片段、插入片段與片段連接處引物、載體反向擴增引物設計
制作最終序列圖譜
引物設計工具
1.在線設計
2.SnapGene軟件更加專業,這款軟件用來繪制圖譜,編輯序列,設計引物,重組克隆都非常方便
3.無縫克隆
1、體系配制;
a. 最適載體用量(ng) = 0.02 × 載體堿基對數,即 0.03 pmol(單片段、多片段適用);
b. 最適片段用量(ng)= 0.04 × 片段堿基對數(單片段);最適片段用量(ng)= 0.02 × 片段堿基對數(多片段)。
注1:單片段重組反應,若單個插入片段的長度大于載體,則應將載體與插入片段的計算公式互換;
注2:單片段重組反應,若單個插入片段的長度小于200bp,則插入片段應使用 5 倍的用量;
注3:多片段重組反應,各個插入片段的用量應不少于10ng,使用上述公式計算最適使用量低于此值時, 直接使用 10ng;
注4:若按上述公式計算出的線性化載體用量低于50ng 或高于200ng,建議按50ng或 200ng用量使用;
注5:線性化載體過長,插入片段過長或片段數過多,克隆陽性率均會降低。
2、體系反應;
1、配制完成后,用移液器輕輕吸打混勻各組分,避免產生氣泡,切勿渦旋;
2、將反應體系置于50℃,反應5~60min。
3、將反應液離心管置于冰上冷卻,之后進行轉化或者儲存于-20℃
注1:推薦使用PCR儀等溫控精準的儀器進行反應,反應時間不足或太長克隆效率均會降低;
注2:插入1~2個片段時,推薦反應時間為5~1 min;插入3~5個片段時,推薦反應時間為15~30min;
注3:當載體骨架在10kb以上或插入片段總長在4kb以上時,推薦延長反應時間至30~60min;
注4:建議在50℃反應完成后進行瞬時離心,將反應液收集至管底。
注5:-20℃ 儲存的重組產物,建議1周內使用完畢。
4.轉化
① 將克隆用的化學感受態細胞置于冰上解凍;
② 取 5~10μl重組產物反應液,加入到100μl感受態細胞中,緩慢吸打混勻,冰上放置30 min;
③ 42℃熱激 45~60 sec,冰浴5min;
④ 加500μlSOC或LB培養基,37℃振蕩培養40~60min(200rpm);
⑤ 將菌液均勻涂布在含有對應抗生素的平板上,倒置于37℃過夜培養。
注 1:推薦使用轉化效率>108CFU/μg的感受態細胞;
注 2:菌落數取決于PCR產物與線性化載體的數量和純度。